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Control biológico de antracnosis (Colletotrichum spp.) en tres
ecotipos de guanábana (Annona muricata L.) en condiciones de
vivero en la provincia de Chanchamayo
Biological Control of Anthracnose (Colletotrichum spp.) in Three Ecotypes of
Soursop (Annona muricata L.) under Nursery Conditions in the Chanchamayo
Province
Yesica Yohana Hilario Román1, Gustavo Santiago Osorio Pagán2,
Miguel Ángel Hernández Martínez3, José Miguel Sermeño Chicas3
1Universidad Nacional de Huancavelica, Huancavelica, Perú
2Universidad Nacional del Centro del Perú, Huancayo, Perú
3Universidad de El Salvador, San Salvador, El Salvador
Autor de correspondencia:
Yesica Yohana Hilario Román
Historial del artículo:
Recibido el 5 de abril de 2025 | Revisado el 10 de abril de 2025 | Aceptado el 16 de mayo de 2025
Referencia del artículo
Hilario Román, Y. Y., Osorio Pagán, G. S., Hernández Martínez, M. Á., & Sermeño Chicas, J. M. (2025).
Control biológico de antracnosis (Colletotrichum spp.) en tres ecotipos de guanábana (Annona
muricata L.) en condiciones de vivero en la provincia de Chanchamayo. Revista Científica
Altoandina de Ciencias Agrarias, 1(1), pp. 36-42. https://doi.org/10.54943/recialcia.682
RESUMEN
La antracnosis en la guanábana (Annona muricata L.) es originado por el hongo del género
Colletotrichum spp. Esta enfermedad produce pérdidas cuantiosas tanto en vivero o campo definitivo,
su control, actualmente, se realiza con productos químicos, siendo toxicos para la salud humana y el
medioambiente, empleando ecotipos que presentan poca severidad e incidencia de esta enfermedad
y el uso de antagonistas que mejor controlen el desarrollo de Colletotrichum spp, se presentan como
parte de una solución del control de dicha enfermedad. En este experimento, se realizó la comparación
de los resultados de tres ecotipos de Annoma muricata L. con cuatro niveles del antagonista y
considerando un tratamiento testigo absoluto. Según el análisis estadístico, el ecotipo blanco presenta
poca incidiencia y severidad al Colletotrichum spp. Y, en el atagonista, el Trichoderma harzianum
muestra mayor efectividad en el control de Colletotrichum spp. Del mismo modo, en la combinación
Y. Y. Hilario Román, G. S. Osorio Pagán, M. Á. Hernández Martínez, & J. M. Sermeño Chicas
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(T. harzianum x ecotipo amarilla) y (T. harzianum x ecotipo negra) muestra menor incidencia y
severidad de esta enfermedad. Estos resultados evidencian el mejor control de Colletotrichum spp.
se puede afirmar que dichos tratamientos interfieren positivamente en la fisiología del cultivo, debido
a que las plantas presentaron mayor vigor dentro de este tratamiento.
Palabras clave: control biológico; antracnosis; guanábana; ecotipo; antagonista
ABSTRACT
Anthracnose in soursop (Annona muricata L.) is caused by the fungus of the genus Colletotrichum
spp. This disease causes significant losses both in nursery and definitive field, its control is currently
carried out with chemicals, being toxic to human health and the environment. Using ecotypes that
present low severity and incidence of this disease and the use of antagonists that better control the
development of Colletotrichum spp, are presented as part of a solution for the control of said disease.
This experiment was based on the comparison of the results of three ecotypes of Annoma muricata L.
with four levels of the antagonist and considering an absolute control treatment. According to the
statistical analysis, it reports that the white ecotype presents little incidence and severity to
Colletotrichum spp. And the antagonist Trichoderma harzianum shows greater effectiveness in
controlling Colletotrichum spp. Similarly, the combination (T. harzianum x yellow ecotype) and (T.
harzianum x black ecotype) showed a lower incidence and severity of this disease. These results
demonstrate improved control of Colletotrichum spp. It can be stated that these treatments positively
interfere with crop physiology, since the plants presented greater vigor within this treatment.
Keywords: biological control; anthracnose; soursop; ecotype; antagonist
INTRODUCCIÓN
Actualmente, ha tomado gran importancia
el cultivo de guanábana (Annona muricata L.)
en la Selva Central por lo tanto se está
incrementando las áreas del cultivo de
guanábana teniendo un incremento del 17 %,
durante el año 2015 tuvo una superficie
cosechada de 229 ha en el año 2016 unos 269
ha (Ministerio de Desarrollo Agrario y Riego
[Minagri], 2017).
Todo esto se debe que se ha incrementado
el consumo de este fruto tanto a nivel
nacional y mundial; debido a sus propiedades
de antioxidantes, antitumorales,
anticancerígenas, actualmente, es utilizada
para el tratamiento contra la diabetes. Y los
productores de este preciado cultivo están
combatiendo muchos problemas con la
presencia de plagas y enfermedad tanto en la
producción de campo como el de vivero,
especialmente en el control de la antracnosis,
siendo la enfermedad principal a nivel global
(Durán, 2007).
Cuando las condiciones ambientales son
óptimas para este patógeno su presencia y el
nivel de daño puede causar pérdidas que
llegan al 90 % de la cosecha y
consecuentemente es la principal dificultad
que por el momento se viene atravesando
para obtener un mejor manejo de control
(Arias, 2004). Los síntomas en el vivero
causan manchas necróticas en el haz de las
hojas de coloración marrón oscuro o color
café, ocasionando pérdidas que llega hasta un
60 %, afectando directamente al productor de
guanaba en sus ganancias en el aspecto
económicos. Para lo cual se debe planificar y
encontrar una alternativa de control mediante
el uso de antagonistas y nuevos ecotipos de
este cultivo. Mediante los métodos de control
se prevé una buena protección sanitaria ya
que estoy no genera resistencia en plagas y/o
enfermedades, de esta manera se evita la
contaminación del medioambiente y aparición
de enfermedades secundarias (Li et al.,
2025).
Los resultados y las conclusiones de este
trabajo de investigación servirán como fuente
Revista Científica Altoandina de Ciencias Agrarias 1(1) (2025)
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de información, para los productores,
profesionales dedicados a este cultivo e
investigadores y que estos serán utilizados en
programas de sanidad vegetal. El presente
trabajo se realizó para determinar el ecotipo,
antagonista e interacción que mejor controle
la antracnosis presentando una poca
incidencia y severidad de este patógeno.
MATERIALES Y MÉTODOS
Ubicación del experimento
El presente trabajo de investigación se
ejecutó en la estación experimental de la
UNDAC La Merced, ubicada en el distrito La
Merced en la provincia de Chanchamayo,
región Junín. Geográficamente, se encuentra
ubicado en las coordenadas 11°04'30.6"S
75°20'12.4"W y una altitud 751 m s. n. m.
presentando las siguientes características
climáticas: temperatura promedio 25,6 °C,
humedad relativa 79.80 % y con precipitación
promedio 173 mm.
Material biológico
Se utilizaron dos especies de
Trichoderma, cada una con concentraciones
de > 1.5 x 1010 conidias/gr para la
inoculación se aplicó con una dosis 200g/200
L de agua. Y para Bacillus subtilis 2.5 x 109
ufc/ml, fue aplicado con una dosis de 5 L
/cilindro 200 L. Como material vegetal, se
utilizaron los tres ecotipos de guanábana.
Figura 1. Identificación de los tres ecotipos en
variabilidad de guanábana en distrito de Perené, los
13 frutos mostrados se diferencian por sus
características externas.
Fuente. Apaza y Salazar (2018), software ArcMap.
Toma de muestra
En el experimento, se trabajó con una
población de 324 platas; de ello, se obtuvo
una muestra de 18 plantas por tratamiento
siento en total de 270 plantas que se obtuvo
por el método al azar.
Metodología
Una vez construida el vivero en el campo
experimental, se instalaron las semillas de
guanábana en el germinadero y en el
transcurso de 45 días se obtuvieron las
plántulas. Estas fueron repicadas en las
bolsas de almácigos teniendo los cuidados
adecuados. Las conidias del patógeno,
obtenidas en el laboratorio de muestras de
hojas enfermas de Colletotrichum spp, se
inocularon en las plantas de guanábana que
fueron en dos periodos el primero en al mes
del repique y el siguiente a los tres días
después (Figura 2). Una vez infectada con
Colletotrichum spp., se aplicaron los
antagonistas en 4 períodos con frecuencia de
7 días siendo la primera aplicación a la
semana de la inoculación del patógeno
(Figura 3). Durante el desarrollo y
crecimiento de la planta, se evaluación las
variables dependientes.
Figura 2. Preparación del medio de cultivo de hongo
Colletotrichum spp (Fase de laboratorio)
Y. Y. Hilario Román, G. S. Osorio Pagán, M. Á. Hernández Martínez, & J. M. Sermeño Chicas
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Figura 3. (A) síntomas de Colletotrichum spp y (B)
aplicación de los hongos antagonistas
Componentes de estudio
Tabla 1. Descripción de los niveles del factor A y B
Factores
Niveles
A. Ecotipo
a1: E. Blanca
a2: E. Negra
a3: E. Amarilla
B. Antagonistas
b1: Bacillus subtilis
b2: Trichoderma viride
b3: T. harzianum
b4: T. viride y T. harzianum
b5: Testigo absoluto
Tabla 2. Descripción de los 15 tratamientos
Tratamiento
Combinaciones
1
a1 b1
2
a1 b2
3
a1 b3
4
a1 b4
5
a1 b5
6
a2 b1
7
a2 b2
8
a2 b3
9
a2 b4
10
a2 b5
11
a3 b1
12
a3 b2
13
a3 b3
14
a3 b4
15
a3 b5
Diseño experimental
Se empleó un Diseño Completamente al
Azar (DCA) con parcelas fraccionadas de 3 por
5, lo que resultó en un total de 15
tratamientos con tres repeticiones,
incluyendo los tratamientos testigo. Para
evaluar las diferencias entre tratamientos, se
aplicó la prueba de comparación de medias de
Duncan con un nivel de significancia del 5 %
(α = 0.05), utilizando el software Excel para
el procesamiento de datos.
Las variables evaluadas fueron:
Incidencia (%)
Para calcular los porcentajes de incidencia
de la enfermedad, se utilizó la siguiente
expresión matemática:
Severidad (%)
Se utilizó una escala de cuantificación de
evaluación para medir esta variable (Tabla 3
y Figura 4).
Las demás variables analizadas fueron la
altura de la planta, el diámetro del tallo y, por
último, se determinó el área foliar mediante
la recolección de hojas de los plantones de
guanábana correspondientes a cada
tratamiento.
Tabla 3. Escala de evaluación para cuantificar
infecciones latentes de Colletotrichum spp. en las
hojas de guanábana
Niveles
% de infecciones latentes
0
0
1
1-20
2
21-40
3
41-60
4
61-80
5
81-100
Fuente. Lizarazo (2005)
Escala de cuantificación de la lámina
foliar
Figura 4. Diagrama esquemático de hoja de
guanábana con los seis niveles de cubrimiento de
infecciones latentes: A) 0 % B) 1-20 % C) 21-40 % D)
41-60 E) 61-80 % F) 81-100 %
Revista Científica Altoandina de Ciencias Agrarias 1(1) (2025)
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RESULTADOS
Incidencia de enfermedad (%)
En el experimento, se observaron
diferencias significativas entre los ecotipos
evaluados. El ecotipo blanco (a1) ocupó la
primera posición al registrar el menor
porcentaje de incidencia de la enfermedad,
con un promedio de 53.33 %, mostrando
diferencia estadística con los ecotipos amarillo
(a3) y negro (a2), cuyos promedios fueron de
63.33 % y 68.89 %, respectivamente. Cabe
señalar que entre los ecotipos a2 y a3 no se
encontraron diferencias estadísticas
significativas.
Tabla 4. Prueba de comparación múltiple según
Duncan para los promedios de incidencia de la
enfermedad en los niveles del factor A (ecotipos de
guanábana)
Niveles
Promedio (%)
Significación
a1
53.33
a
a3
63.33
b
a2
68.89
b
A. L. S. (D) 0.05 = 8.003, 8.294
Los promedios de los tratamientos de la
incidencia de la enfermedad, para cada nivel
del factor B, muestran que los niveles b3 y b4
reportaron una baja incidencia con medias de
44.44 y 55.56 %, respectivamente, sin
mostrar significancia estadística entre ellos;
No obstante, el tratamiento b3 mostró
diferencias estadísticas frente a los niveles
b2, b1 y b5, cuyos promedios de incidencia
fueron más altos: 61.11 %, 88.52 % y 79.63
%, respectivamente, indicando una mayor
presencia de antracnosis.
Tabla 5. Prueba de comparación múltiple según
Duncan para las medias de los tratamientos de la
incidencia de la enfermedad, en los niveles del factor
B
Nivel
Promedio (%)
Significación
b 3
44.440
a
b 4
55.560
a b
b 2
61.110
b c
b 1
68.520
c d
b 5
79.630
d
A. L. S. (D) 0.05
En la causa de variación de la internación
AxB del ANVA, no hubo significación
estadística; es decir, los niveles de cada
factor actuaron de modo independiente. En la
Figura 5, se muestra la respuesta de la
enfermedad en todos los tratamientos
estudiados en relación que, con la realización
de las evaluaciones de semana a semana, en
el tratamiento T10 (a2b5) se observa que
tiene mayor incidencia de la enfermedad y los
tratamientos T3 (a1b3), T4 (a1b4) y T8
(a2b3) presentan menor incidencia.
Figura 5. Respuesta de la progresión de la incidencia
de la antracnosis en las plantas del vivero de
guanábana provocado por Colletotrichum spp.
Severidad de enfermedad (%)
Con relación a la severidad de antracnosis,
presenta significancia estadística en los
Y. Y. Hilario Román, G. S. Osorio Pagán, M. Á. Hernández Martínez, & J. M. Sermeño Chicas
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ecotipos, antagonista, así como en las
interacciones de ecotipo y antagonistas,
teniendo en esta ultima los cuatro primeros
tratamientos a1b3 (ecotipo Blanca x T.
harzianum), a2b3 (ecotipo negra x T.
harzianum), a3b3 (ecotipo amarilla x T.
harzianum) y a1b4 (ecotipo Blanca x T. viride
y T. harzianum), presentaron bajo porcentaje
de severidad con medias de 4.468, 5.165,
5.875 y 5.957 % respectivamente.
Tabla 6. Prueba de comparación múltiple de Duncan
para las medias de los tratamientos de severidad de la
enfermedad para las interacciones de los niveles del
factor A y B (ecotipos x guanabana)
N.°
Interacción
Promedio (%)
Significación
1
a1b3
4.468
a
2
a2b3
5.165
a
3
a3b3
5.875
a b
4
a1b4
5.957
a b
5
a2b4
8.405
b c
6
a3b4
9.400
c
7
a1b2
13.210
d
8
a2b2
15.348
d e
9
a1b1
17.972
e f
10
a3b2
19.104
f g
11
a3b1
20.145
f g
12
a2b1
21.254
g
13
a3b5
25.377
h
14
a1b5
26.048
h
15
a2b5
33.216
i
A. L. S. (D) 0.05 = 2.446, 2.562, 2,641, 2.696,2.738,
2.770, 2.795, 2816, 2.832, 2.846, 2.858, 2.867,
2.875, 2.881
DISCUSIÓN
En el estudio, se determinó el ecotipo, los
antagonistas y la interacción de ambos. El
ecotipo blanco manifestó menor incidencia
(tabla 3) la diferencia estadística fue debido a
que el ecotipo blanca tiene tolerancia tanto en
la fase de vivero como de campo, corroborado
por (Apaza & Salazar, 2018); con relación
ecotipo amarillo este es considerado casi
tolerante y el ecotipo negro es susceptible a
la antracnosis. El T. harzianun y el T. viride
con harzianum (Tabla 4) acciona ante el
Colletotrichum sp. con sus mecanismos de
acción por resistencia inducida, parasitismo,
competencia y antibiosis, tal como lo explica
Rousoss (2002). Las interacciones a1b3,
a2b3, a3b3 y a1b4 (Tabla 5) tienen menor
porcentaje de severidad estas interacciones
están supeditados por el nivel b3 (T.
harzianum) que presenta mayor mecanismos
de acción (parasitismo, competencia,
antibiosis y resistencia inducida) ante el
hongos estos resultados coincide con el
reporte de Le Thanh et al. (2025), quien
reporta resultados similares que T. harzianum
presentó el mayor porcentaje de inhibición,
con aproximadamente el 63,78 % a), al
desarrollo y crecimiento de antracnosis en
cebolla; de igual manera, Es-Soufi et al.
(2020) reporta que las cepas
de T.harzianum y B. amyloliquefaciens
presentaron la capacidad de inhibir el
crecimiento y desarrollo del micelio del
Colletotrichum sp. en fresa. Asimismo, la
interacción a1b3 muestra significancia
estadística a las 11 últimas interacciones,
debido a que los ecotipos y antagonistas
restantes no tuvieron mecanismo de acción
efectivo frente al patógeno, corroborado con
Rousoss (2002).
CONCLUSIONES
La guanábana de ecotipo blanco, el
antagonista T. Harzianum y para la
interacción (ecotipo x guanábana) las
mejores interacciones fueron a1b3, a2b3,
a3b3, a1b4 con medias de 4.468, 5.165,
5.875, 5.957 %, respectivamente. Resultaron
los más eficientes por presentar menores
porcentajes de incidencia y severidad de
Colletotrichum spp., por lo tanto, pueden
considerarse como estrategias para un
manejo integrado de enfermedad y poder
experimentar estos resultados en otros
cultivos.
CONFLICTO DE INTERESES
Los autores manifiestan que no tienen
ningún conflicto de intereses relacionado con
la publicación de este artículo científico.
Revista Científica Altoandina de Ciencias Agrarias 1(1) (2025)
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REFERENCIAS
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biológico y químicos para el control de la
antracnosis en la guanábana (Anona
muricata L.), causado por el hongo
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